Human Oral Squamous Cell Carcinoma Organoid Medium Kit Plus

人口腔鳞癌类器官培养基套装Plus

模基生物人口腔鳞癌类器官培养基套装Plus（Human Oral Squamous Cell Carcinoma Organoid Medium Kit Plus）是一种化学定义的细胞培养基，用于建立和维持人口腔鳞癌类器官。病人来源的肿瘤类器官概括了原始肿瘤的基因组和病理特征，因此在医学研究和精准医学中具有巨大的前景。

2、 产品信息

3、 其他自备材料和试剂

注意：“-”为非模基生物产品，无对应货号，可选用符合实验室标准的同类产品

4、 人口腔鳞癌类器官完全培养基使用说明

1、   收到类器官培养基后，将-20℃储存的类器官培养基转移至4℃冰箱进行解冻。

2、   待培养基完全解冻后上下颠倒充分混匀，在生物安全柜或洁净工作台中根据日常需求量进行分装，推荐分装成10 mL/管。

3、   分装后的培养基请密封后储存于-20℃，使用时取出分装的培养基放置室温平衡后即可使用。

5、 患者来源的口腔鳞癌类器官的建立和传代培养

注意：涉及主要人体组织材料的研究必须遵循所有相关的机构和政府法规。在收集主要人体组织材料之前，必须获得所有受试者的知情同意。

a)     原代人口腔鳞癌类器官的建立

1、   用离心管将原发性人口腔鳞癌组织碎片收集在冰冷的活组织细胞保存液中，样本需要被活组织保存液完全覆盖（如果样品已经放在其他缓冲液或培养基中，请用预冷的活组织保存液替换整个溶液）。于2~8℃条件下低温运输至实验室。

2、   实验前先将基质胶放置4℃冰上解冻，同时取出培养基放置室温平衡。与细胞接触的离心管、试管和塑料吸头需要用类器官培养防粘附润洗液润洗后使用。

3、   在洁净工作台中，将样本转移至培养皿中，评估获得的组织是否完全由上皮组成。如果存在脂肪或肌肉组织，请在解剖显微镜下使用手术剪刀或手术刀和镊子尽可能多地去除这些非上皮成分。如果没有脂肪或肌肉组织，请立即继续下一步。

4、   用上皮类器官基础培养基或含双抗的DPBS冲洗组织两次。

5、   使用手术剪刀或手术刀将组织切碎成1~3 mm³的小碎片，置于细胞培养皿中。

6、   在15 mL离心管中加入10 mL肿瘤组织消化液，放入组织片段后在37℃下消化，消化时间可变，置于37℃消化20~40分钟。仔细监测消化过程，可适当吹打取上清观察消化程度。当大多数组织片段能够通过1 mL移液器吸头时，消化过程即完成。

7、   将FBS加入组织消化混合物中，最终浓度为2%，并使用100 μm细胞过滤器过滤。

8、   收集滤液并在4℃下以250 g离心3分钟。在可见的红色沉淀的情况下，吸弃上清液，加入2 mL红细胞裂解液重悬沉淀，在室温下裂解红细胞1分钟，并在4℃下以250 g离心3分钟。

9、   吸弃上清液并将沉淀重悬于上皮类器官基础培养基中，在4℃下以250g离心3分钟，再次重复此步骤以完全去除消化液和FBS，在离心前可取适量的悬液进行细胞活性检测。

10、 吸弃上清液，根据培养需求取适量细胞沉淀加入基质胶（>70%）并在冰上混匀（注意：混匀吹打的动作要轻柔，切忌产生大量气泡，常温混匀则需要控制在15秒内），混匀后置于冰上。注：基质胶应保存在冰上以防止其凝固。尽快进行该过程。大约10,000个细胞应接种在25 μL基质胶中。不要过度稀释基质胶（基质胶比例应>70%（基质胶体积/总体积）），因为这可能会抑制固体液滴的正确形成。

11、 将基质胶和细胞的混合悬液点入培养孔板底部正中央，使用枪头稍微摊平悬液，注意避免悬液接触孔板侧壁。（推荐：96孔板接种3~10μL/孔，48孔板接种10~20μL/孔，24孔板接种20~30μL/孔）。

12、 注意：一旦类器官重悬于基质胶中，尽快进行种板，因为基质胶可能会在试管或移液器吸头中凝固。

13、 将培养板放入37℃和5%CO₂的培养箱中15~25分钟，让基质胶凝固。

14、 待基质胶完全凝固后，沿壁缓慢加入室温平衡的口腔鳞癌类器官培养基，避免破坏已凝固结构。（推荐：96孔板加入100μL/孔，48孔板加入250μL/孔，24孔板加入500μL/孔）。注：不要将培养基直接添加到基质胶液滴的顶部，因为这可能会破坏已凝固结构。

15、 将培养板置于37℃和5%CO₂的恒温培养箱中。

16、 每隔2~3天更换一次培养基，小心地从孔中吸出培养基，并加入新鲜的室温平衡的类器官完全培养基。

17、 密切监测类器官生长状态，理想情况下，口腔鳞癌类器官应在7~10天内建成。

b)      人口腔鳞癌类器官的传代培养

1、   待类器官培养6-7天或者类器官直径大于150 μm（或变黑不再增大时），即可进行类器官的传代（每代约1~2周）。以下操作与细胞接触的耗材均需用润洗液润洗后使用。

2、   吸弃旧培养基，加入等体积上皮类器官基础培养基，用细胞刮刀或者移液管吸头尖端轻轻刮下（或吹打）基质胶和类器官混合物，转移至1.5 mL离心管中（每管最多收集2~3孔类器官，避免体积过大消化效率低），吹打5~10次，使类器官和基质胶分离，300 g离心3分钟。

3、   去除上清液加入5倍于基质胶和类器官混合物体积的类器官消化液，吹打混匀后置于37℃培养箱中消化3~5分钟。取出吹打混匀，取10 μL混合液镜检是否消化成小的细胞团块，消化不充分可适当延长消化时间。若要求细胞计数则需消化成单个细胞，可延长消化时间至10~20分钟后终止消化后，用台盼蓝染色进行细胞计数。密切监视消化过程，使在类器官解离液中的孵育时间最短。

4、   消化完成后，加入5倍体积上皮类器官基础培养基吹打混匀以终止消化反应，然后250 g离心3分钟。

5、   吸弃上清液，用上皮类器官基础培养基清洗2次以去除残留的消化液。最后一次清洗可将类器官合并收集在同一个离心管中。

6、   清洗完成后将离心沉淀中的细胞进行传代培养，在细胞沉淀中加入基质胶（>70%）并在冰上混匀（注意，混匀吹打的动作要轻柔，切忌产生大量气泡，常温混匀则需要控制在15秒内），混匀后置于冰上。

注意：基质胶稀释比例应在70%以上以保证培养过程中基质胶的结构稳定性。

7、   将基质胶和细胞的混合悬液点入培养孔板底部正中央，使用枪头稍微摊平悬液，注意避免悬液接触孔板侧壁。（推荐：96孔板接种3~10 μL/孔，48孔板接种10~20 μL/孔，24孔板接种20~30 μL/孔）。注意：为防止基质胶室温凝固，此步骤应尽快完成。

8、   将培养板放入37℃和5%CO₂的培养箱中15~25分钟，让基质胶凝固。

9、   待基质胶完全凝固后，沿壁缓慢加入室温平衡的类器官完全培养基，避免破坏已凝固结构。（推荐：96孔板加入100 μL/孔，48孔板加入250 μL/孔，24孔板加入500 μL/孔）。注：不要将培养基直接添加到基质胶液滴的顶部，因为这可能会破坏已凝固结构。

10、 将培养板置于37℃和5%CO₂的恒温培养箱中。

11、 每隔2~3天更换一次培养基，小心地从孔中吸出培养基，并加入新鲜的室温平衡的类器官完全培养基。

12、 密切监测类器官生长状态，直到类器官需要进行下一步实验。

V2.2版

更新时间：2025/11/3